دوره 34، شماره 5 - ( مرداد 1402 )
جلد 34 شماره 5 صفحات 267-259 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Nasresfahani A, Pashae K, Tavalaee M, Behdarvandiyan P, Hekmatpazhooh Z, Nasr-Esfahani M H. ASSESSMENT OF SPERM DNA INTEGRITY IN OLIGOZOOSPERMIC INDIVIDUALS REFERRED TO ISFAHAN FERTILITY AND INFERTILITY CENTER: A CROSS-SECTIONAL STUDY. Studies in Medical Sciences 2023; 34 (5) :259-267
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5957-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5957-fa.html
نصر اصفهانی علی، پاشایی کوثر، تولائی مرضیه، بهداروندیان پریا، حکمت پژوه زهرا، نصر اصفهانی محمد حسین. بررسی سلامت DNA اسپرم در افراد الیگوزواسپرمی مراجعه‌کننده به مرکز باروری و ناباروری اصفهان: یک مطالعه مقطعی. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1402; 34 (5) :259-267
علی نصر اصفهانی 
، کوثر پاشایی ، مرضیه تولائی* ، پریا بهداروندیان ، زهرا حکمت پژوه ، محمد حسین نصر اصفهانی
، کوثر پاشایی ، مرضیه تولائی* ، پریا بهداروندیان ، زهرا حکمت پژوه ، محمد حسین نصر اصفهانی
دانشیار، پژوهشگاه رویان، پژوهشکده زیست فناوری جهاددانشگاهی، مرکز تحقیقات پزشکی تولید مثل، گروه زیست فناوری جانوری، اصفهان، ایران (نویسنده مسئول) ، Tavalaee.m@gmail.com
چکیده: (978 مشاهده)
پیش‌زمینه و هدف: الیگوزواسپرمی یا کاهش غلظت اسپرم اغلب با تحرک و مورفولوژی غیرطبیعی همراه است که نشان‌دهنده عملکرد غیرطبیعی اسپرماتوژنز در بیضه است. سلامت DNA اسپرم نقش مهمی در رشد جنین و باروری دارد. بنابراین، هدف ما ارزیابی سلامت DNA اسپرم در جمعیت بزرگی از مردان اولیگوزواسپرمی و نرموزواسپرمی بود.
مواد و روش کار: در این مطالعه مقطعی، 967 نمونه الیگوزواسپرمی (تعداد اسپرم کمتر از 39 میلیون در هر انزال) و 967 نمونه نرموزواسپرمی بر اساس معیارهای سازمان بهداشت جهانی (WHO-2021) وارد شدند. آسیب DNA اسپرم با روش SCSA و TUNEL ارزیابی شد. تجزیه‌وتحلیل‌های آماری با استفاده از نرم‌افزار)SPSS نسخه 22 ) انجام شد و سطح معنی‌داری کمتر از05/0 در نظر گرفته شد.
یافته‌ها: میانگین آسیب DNA اسپرم و همچنین رنگ‌پذیری DNA در افراد الیگوزواسپرمی به‌طور معنی‌داری بیشتر از افراد نرموزواسپرمی بود (p<0.001). برخلاف حجم منی و تعداد اسپرم که به‌طور معنی‌داری کمتر بود (p<0.001)، میانگین مورفولوژی غیرطبیعی اسپرم در مردان اولیگوزواسپرمی نسبت به مردان نرموزواسپرمی به‌طور معنی‌داری بیشتر بود (p<0.001).
بحث و نتیجه‌گیری: در افراد الیگوزواسپرمی علاوه بر اینکه تعداد، مورفولوژی و تحرک اسپرم نیز بر اساس آستانه WHO می‌تواند غیرطبیعی باشد. همچنین آسیب DNA اسپرم نیز بطور معنی‌داری بالاست که می‌تواند نشان‌دهنده اسپرماتوژنز غیرطبیعی و عدم بلوغ اپیدیدیمی باشد. بنابراین، بر اساس شدت آسیب، بهتر است راهبردهای مصرف دارویی یا روش‌های کمک درمان را بیشتر مدیریت کرد تا بهترین تصمیم برای درمان گرفته شود.
مواد و روش کار: در این مطالعه مقطعی، 967 نمونه الیگوزواسپرمی (تعداد اسپرم کمتر از 39 میلیون در هر انزال) و 967 نمونه نرموزواسپرمی بر اساس معیارهای سازمان بهداشت جهانی (WHO-2021) وارد شدند. آسیب DNA اسپرم با روش SCSA و TUNEL ارزیابی شد. تجزیه‌وتحلیل‌های آماری با استفاده از نرم‌افزار)SPSS نسخه 22 ) انجام شد و سطح معنی‌داری کمتر از05/0 در نظر گرفته شد.
یافته‌ها: میانگین آسیب DNA اسپرم و همچنین رنگ‌پذیری DNA در افراد الیگوزواسپرمی به‌طور معنی‌داری بیشتر از افراد نرموزواسپرمی بود (p<0.001). برخلاف حجم منی و تعداد اسپرم که به‌طور معنی‌داری کمتر بود (p<0.001)، میانگین مورفولوژی غیرطبیعی اسپرم در مردان اولیگوزواسپرمی نسبت به مردان نرموزواسپرمی به‌طور معنی‌داری بیشتر بود (p<0.001).
بحث و نتیجه‌گیری: در افراد الیگوزواسپرمی علاوه بر اینکه تعداد، مورفولوژی و تحرک اسپرم نیز بر اساس آستانه WHO می‌تواند غیرطبیعی باشد. همچنین آسیب DNA اسپرم نیز بطور معنی‌داری بالاست که می‌تواند نشان‌دهنده اسپرماتوژنز غیرطبیعی و عدم بلوغ اپیدیدیمی باشد. بنابراین، بر اساس شدت آسیب، بهتر است راهبردهای مصرف دارویی یا روش‌های کمک درمان را بیشتر مدیریت کرد تا بهترین تصمیم برای درمان گرفته شود.
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
عمومى
فهرست منابع
1. McLachlan RI. Approach to the patient with oligozoospermia. J Clin Endocrinol Metab 2013;98(3): 873-80. doi: 10.1210/jc.2012-3650. [DOI:10.1210/jc.2012-3650] [PMID]
2. Cooper TG, Hellenkemper B, Jonckheere J, Callewaert N, Grootenhuis AJ, Kersemaekers WM, et al. Azoospermia: virtual reality or possible to quantify? J Androl 2006;27(4): 483-90. doi: 10.2164/jandrol.05210. [DOI:10.2164/jandrol.05210] [PMID]
3. Song SH, Bak CW, Lim JJ, Yoon TK, Lee DR, Kwon SW. Natural course of severe oligozoospermia in infertile male: influence on future fertility potential. J Androl 2010;31(6): 536-9. doi: 10.2164/jandrol.110.010199. [DOI:10.2164/jandrol.110.010199] [PMID]
4. Avendaño C, Franchi A, Taylor S, Morshedi M, Bocca S, Oehninger S. Fragmentation of DNA in morphologically normal human spermatozoa. Fertil Steril 2009;91(4): 1077-84. doi: 10.1016/j.fertnstert.2008.01.015. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2008.01.015] [PMID]
5. Nasr-Esfahani MH, Deemeh MR, Tavalaee M. New era in sperm selection for ICSI. Int J Androl 2012;35(4): 475-84. doi: 10.1111/j.1365-2605.2011.01227.x. [DOI:10.1111/j.1365-2605.2011.01227.x] [PMID]
6. Kullisaar T, Türk S, Kilk K, Ausmees K, Punab M, Mändar R. Increased levels of hydrogen peroxide and nitric oxide in male partners of infertile couples. Andrology 2013;1(6): 850-8. doi: 10.1111/j.2047-2927.2013.00123.x. [DOI:10.1111/j.2047-2927.2013.00123.x] [PMID]
7. Agarwal A, Mulgund A, Sharma R, Sabanegh E. Mechanisms of oligozoospermia: an oxidative stress perspective. Syst Biol Reprod Med 2014;60(4): 206-16. doi: 10.3109/19396368.2014.918675. [DOI:10.3109/19396368.2014.918675] [PMID]
8. Borges E Jr, Zanetti BF, Setti AS, Braga DPAF, Provenza RR, Iaconelli A Jr. Sperm DNA fragmentation is correlated with poor embryo development, lower implantation rate, and higher miscarriage rate in reproductive cycles of non-male factor infertility. Fertil Steril 2019;112(3): 483-490. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.04.029. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2019.04.029] [PMID]
9. Aitken RJ, De Iuliis GN, Nixon B. The Sins of Our Forefathers: Paternal Impacts on De Novo Mutation Rate and Development. Annu Rev Genet 2020; 54: 1-24. doi: 10.1146/annurev-genet-112618-043617. [DOI:10.1146/annurev-genet-112618-043617] [PMID]
10. Aitken RJ. Role of sperm DNA damage in creating de-novo mutations in human offspring: the 'post-meiotic oocyte collusion' hypothesis. Reprod Biomed Online 2022;45(1): 109-124. doi: 10.1016/j.rbmo.2022.03.012. [DOI:10.1016/j.rbmo.2022.03.012] [PMID]
11. World Health Organization (2010). WHO laboratory manual for the examination and processing of human semen, 5th ed. World Health. Organization. [URL]
12. World Health Organization. WHO Laboratory Manual for the Examination and Processing of Human Semen. 6th ed. WHO Press; Geneva, Switzerland: 2021.
13. Boitrelle F, Shah R, Saleh R, Henkel R, Kandil H, Chung E, et al. The Sixth Edition of the WHO Manual for Human Semen Analysis: A Critical Review and SWOT Analysis. Life (Basel). 2021;11(12): 1368. doi: 10.3390/life11121368. [DOI:10.3390/life11121368] [PMID] [PMCID]
14. Evenson DP. Sperm chromatin structure assay (SCSA®). Methods Mol Biol 2013;927: 147-64. doi: 10.1007/978-1-62703-038-0_14. [DOI:10.1007/978-1-62703-038-0_14] [PMID]
15. Agarwal A, Allamaneni SS. Sperm DNA damage assessment: a test whose time has come. Fertil Steril 2005;84(4): 850-3. doi: 10.1016/j.fertnstert.2005.03.080. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2005.03.080] [PMID]
16. Dai Y, Liu J, Yuan E, Li Y, Shi Y, Zhang L. Relationship Among Traditional Semen Parameters, Sperm DNA Fragmentation, and Unexplained Recurrent Miscarriage: A Systematic Review and Meta-Analysis. Front Endocrinol 2022;12: 802632. doi: 10.3389/fendo.2021.802632. [DOI:10.3389/fendo.2021.802632] [PMID] [PMCID]
17. Chen Q, Li D, Cheng J, Xue L, Li J. Influence of the sperm DNA fragmentation index on the outcome of rescue ICSI and the clinical value of rescue ICSI. Zhong Nan Da Xue Xue Bao Yi Xue Ban 2022;47(1): 63-71. English, Chinese. doi: 10.11817/j.issn.1672-7347.2022.210021. [Google Scholar]
18. Ribas-Maynou J, Novo S, Torres M, Salas-Huetos A, Rovira S, Antich M, et al. Sperm DNA integrity does play a crucial role for embryo development after ICSI, notably when good-quality oocytes from young donors are used. Biol Res 2022; 55(1): 41. doi: 10.1186/s40659-022-00409-y. [DOI:10.1186/s40659-022-00409-y] [PMID] [PMCID]
19. Ribas-Maynou J, Yeste M, Becerra-Tomás N, Aston KI, James ER, Salas-Huetos A. Clinical implications of sperm DNA damage in IVF and ICSI: updated systematic review and meta-analysis. Biol Rev Camb Philos Soc 2021;96(4): 1284-300. doi: 10.1111/brv.12700. [DOI:10.1111/brv.12700] [PMID]
20. Verdi A, Nasr-Esfahani M H, Forozanfar M, Tavalaee M. Correlation of Sperm Parameters With Sperm DNA Damage or Sperm Nucleus Chromatin Status in Oligospermic Individuals Referred to Qom Jihad Daneshgahi Infertility Treatment Center in 2017 (Iran). Qom Univ Med Sci J 2021;15(3): 222-9. [DOI:10.52547/qums.15.3.222]
21. Jerre E, Bungum M, Evenson D, Giwercman A. Sperm chromatin structure assay high DNA stainability sperm as a marker of early miscarriage after intracytoplasmic sperm injection. Fertil Steril 2019;112(1): 46-53. e2. doi: 10.1016/j.fertnstert.2019.03.013. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2019.03.013] [PMID]
22. Evenson DP, Djira G, Kasperson K, Christianson J. Relationships between the age of 25,445 men attending infertility clinics and sperm chromatin structure assay (SCSA®®) defined sperm DNA and chromatin integrity. Fertil Steril 2020;114(2): 311-20. doi: 10.1016/j.fertnstert.2020.03.028. [DOI:10.1016/j.fertnstert.2020.03.028] [PMID]
23. Mohammadi Z, Tavalaee M, Gharagozloo P, Drevet JR, Nasr-Esfahani MH. Could high DNA stainability (HDS) be a valuable indicator of sperm nuclear integrity? Basic Clin Androl 2020;30: 12. doi: 10.1186/s12610-020-00110-8. [DOI:10.1186/s12610-020-00110-8] [PMID] [PMCID]
24. Lu JC. High DNA stainability (HDS) should not be recommended as a marker for the detection of sperm DNA damage. Andrologia 2022;54(7): e14442. doi: 10.1111/and.14442. [DOI:10.1111/and.14442]
25. Booze M, Brannian J, Von Wald T, Hansen K, Kasperson K, Evenson DP. High DNA stainability in the SCSA® is associated with poor embryo and lower implantation rate. BioMed Online 2019;39: e3-4.development [DOI:10.1016/j.rbmo.2019.07.011]
28. Thornhill JA, Fanning DM, Davis NF, Ward F, Shamoun O, Brinsden P. Testicular Sperm Extraction and Intracytoplasmic Sperm Injection: Outcomes in a specialist fertility centre. Iran Med J 2015;108(9): 263-5. [Google Scholar]
29. Alkandari MH, Moryousef J, Phillips S, Zini A. Testicular Sperm Aspiration (TESA) or Microdissection Testicular Sperm Extraction (Micro-tese): Which Approach is better in Men with Cryptozoospermia and Severe Oligozoospermia? Urology 2021;154: 164-9. doi: https: //doi.org/10.1016/j.urology.2021.04.037 [DOI:10.1016/j.urology.2021.04.037] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
