دوره 35، شماره 3 - ( خرداد 1403 )
جلد 35 شماره 3 صفحات 203-192 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Ethics code: IR-UU-AEC-3/40
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Babadi Akasheh M, Delirazh N, Seyyedi S. EVALUATION OF TOLL-LIKE RECEPTORS (TLRS) AGONISTS-TREATED MOUSE BONE MARROW-DERIVED MESENCHYMAL STEM CELLS AND THEIR CULTURE SUPERNATANT ON NK CELLS’ ACTIVITY AGAINST YAC-1 CELLS. Studies in Medical Sciences 2024; 35 (3) :192-203
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6224-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6224-fa.html
بابادی عکاشه محمد، دلیرژ نوروز، سیدی شهرام. اثر سلول‌های بنیادی مزانشیمی پولاریزه شده با آگونیست‌های گیرنده‌های شبه تول (TLRs) و مایع رویی آن‌ها مشتق از مغز استخوان موش بر فعالیت سلول کشی سلول‌های کشنده طبیعی(NK Cells) در مقابل سلول‌های سرطانی Yac-1. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1403; 35 (3) :192-203
گروه میکروبیولوژی، دانشکده دامپزشکی، دانشگاه ارومیه، ارومیه، ایران (نویسنده مسئول) ، delirezhn@gmail.com
چکیده: (108 مشاهده)
پیش‌زمینه و هدف: سلول‌های بنیادی مزانشیمی، سلول‌های پیش‌ساز چند توان، غیر خون‌ساز ساکن در مغز استخوان و سایر بافت‌ها می‌باشند. پتانسـیل تعدیل ایمنی و تمایزی، این سلول‌ها را ابزار بسیار مناسبی برای درمان بسیاری از بیماری‌ها قرار می‌دهد. در این تحقیق اثر سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار شده مشتق از مغز استخوان موش و مایع رویی آن‌ها بر فعالیت سلول‌های کشـنده طبیعی بررسی شد.
مواد و روش کار: سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق از مغز استخوان‌های ران و درشت نی موش سوری جدا شدند. سلول‌های پاساژ سوم، با غلظت 10 نانوگرم در میلی‌لیتر از لیپو پلی ساکارید و Poly I-C به مدت یک ساعت تیمار شدند. سپس تأثیر سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار شده و مایع رویی آن‌ها بر فعالیت سلول کشی سلول‌های کشنده طبیعی در مقابل سلول‌های سرطانی لنفوئیـدی Yac-1 (به‌عنوان سـلول هـدف) بـا اسـتفاده از دستگاه فلوسایتومتری بعد از 12، 24 و 72 ساعت بررسی شد.
یافته‌ها: سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار شده با لیپو پلی ساکارید و Poly I-C و مایع رویی آن‌ها به ترتیب باعث 38درصد و 35درصد کاهش در میزان سلول‌های مرده Yac-1 (آپوپتوز و نکروز) نسبت به سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار نشده (44درصد)، گردید. در مورد میزان زنده‌مانی سلول‌ها این تأثیر برعکس بود یعنی سلول‌های تیمار شده افزایش میزان زنده‌مانی را نشان دادند.
بحث و نتیجه‌گیری: نتایج حاصل از این تحقیق نشان می‌دهد که تیمار سلول‌های بنیـادی مزانشـیمی بـا لیپـو پلـی سـاکارید باعث تقویت اثرات مهاری این سلول‌ها روی سلول‌های کشنده طبیعی می‌شود.
مواد و روش کار: سلول‌های بنیادی مزانشیمی مشتق از مغز استخوان‌های ران و درشت نی موش سوری جدا شدند. سلول‌های پاساژ سوم، با غلظت 10 نانوگرم در میلی‌لیتر از لیپو پلی ساکارید و Poly I-C به مدت یک ساعت تیمار شدند. سپس تأثیر سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار شده و مایع رویی آن‌ها بر فعالیت سلول کشی سلول‌های کشنده طبیعی در مقابل سلول‌های سرطانی لنفوئیـدی Yac-1 (به‌عنوان سـلول هـدف) بـا اسـتفاده از دستگاه فلوسایتومتری بعد از 12، 24 و 72 ساعت بررسی شد.
یافته‌ها: سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار شده با لیپو پلی ساکارید و Poly I-C و مایع رویی آن‌ها به ترتیب باعث 38درصد و 35درصد کاهش در میزان سلول‌های مرده Yac-1 (آپوپتوز و نکروز) نسبت به سلول‌های بنیادی مزانشیمی تیمار نشده (44درصد)، گردید. در مورد میزان زنده‌مانی سلول‌ها این تأثیر برعکس بود یعنی سلول‌های تیمار شده افزایش میزان زنده‌مانی را نشان دادند.
بحث و نتیجه‌گیری: نتایج حاصل از این تحقیق نشان می‌دهد که تیمار سلول‌های بنیـادی مزانشـیمی بـا لیپـو پلـی سـاکارید باعث تقویت اثرات مهاری این سلول‌ها روی سلول‌های کشنده طبیعی می‌شود.
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
ایمونولوژی
فهرست منابع
1. Lewis WD, Lilly S, Jones KL. Lymphoma: diagnosis and treatment. Am Fam Physician 2020;101(1):34-41. [google scholar]
2. Wagers AJ, Weissman IL. Plasticity of adult stem cells. Cell 2004;116(5):639-48. [DOI:10.1016/S0092-8674(04)00208-9] [PMID]
3. Mj S. Derivation of pluripotent stem cells from cultured human primordial germ cells. Proc Natl Acad Sci USA 1998;95(23):13726-31. [DOI:10.1073/pnas.95.23.13726] [PMID] []
4. Shi Y, Inoue H, Wu JC, Yamanaka S. Induced pluripotent stem cell technology: a decade of progress. Nat Rev Drug Discov 2017;16(2):115-30. [DOI:10.1038/nrd.2016.245] [PMID] []
5. Javanmardi Z, Rezaei FS, Delirezh N, Habbenaghi R. Evaluation of the effect of bone marrow derived stem cells on the initial stages of repair of the deep flexor joints of the fingers in rabbits: a biomechanical and immunohistochemical study. Urmia Med J 2011;22(6):521-9. [URL]
6. Baksh D, Song L, Tuan RS. Adult mesenchymal stem cells: characterization, differentiation, and application in cell and gene therapy. J Cell Mol Med 2004;8(3):301-16. [DOI:10.1111/j.1582-4934.2004.tb00320.x] [PMID] []
7. Guo S, Huang C, Han F, Chen B, Ding Y, Zhao Y, et al. Gastric cancer mesenchymal stem cells inhibit NK cell function through mTOR signalling to promote tumour growth. Stem Cells Int 2021;2021(1):9989790. [DOI:10.1155/2021/9989790] [PMID] []
8. Mokarizadeh A, Delirezh N, Morshedi A, Farshid AA, Moseibi Q. The effect of exosomes derived from mesenchymal stem cells on the polarization of the immune response of helper T lymphocytes and the clinical picture of autoimmune experimental allergic encephalitis. Urmia Med J 2013;23(2):191-201. [URL]
9. Liu Z, Guo Y, Huang L, Jia Y, Liu H, Peng F, et al. Bone marrow mesenchymal stem cells regulate the dysfunction of NK cells via the T cell immunoglobulin and ITIM domain in patients with myelodysplastic syndromes. Cell Commun Signal 2022;20(1):169. [DOI:10.1186/s12964-022-00985-2] [PMID] []
10. Waterman B, Walker JJ, Swaims C, Shortt M, Todd MS, Machen SM, et al. The efficacy of combined cryotherapy and compression compared with cryotherapy alone following anterior cruciate ligament reconstruction. J Knee Surg 2012;25(02):155-60. [DOI:10.1055/s-0031-1299650] [PMID]
11. Darabi E, Morshedi A, Delirezh N, Tokmechi A, Mokarizadeh A. The effect of peptidoglycan-lipopolysaccharide on the production of nitric oxide by mouse mesenchymal stem cells (MSC) and the induction of apoptosis in activated T cells. Urmia Med J 2012;24(12):996-1004. [URL]
12. Rasmusson I. Immune modulation by mesenchymal stem cells. Exp Cell Res 2006;312(12):2169-79. [DOI:10.1016/j.yexcr.2006.03.019] [PMID]
13. Krampera M, Cosmi L, Angeli R, Pasini A, Liotta F, Andreini A, et al. Role for interferon-γ in the immunomodulatory activity of human bone marrow mesenchymal stem cells. Stem Cells 2006;24(2):386-98. [DOI:10.1634/stemcells.2005-0008] [PMID]
14. Waterman RS, Henkle SL, Betancourt AM. Mesenchymal stem cell 1 (MSC1)-based therapy attenuates tumor growth whereas MSC2-treatment promotes tumor growth and metastasis. 2012. [DOI:10.1371/journal.pone.0045590] [PMID] []
15. Yigitbilek F, Ozdogan E, Abrol N, Park WD, Hansen MJ, Dasari S, et al. Liver mesenchymal stem cells are superior inhibitors of NK cell functions through differences in their secretome compared to other mesenchymal stem cells. Front Immunol 2022;13:952262. [DOI:10.3389/fimmu.2022.952262] [PMID] []
16. Gonzalez VD, Huang Y-W, Delgado-Gonzalez A, Chen S-Y, Donoso K, Sachs K, et al. High-grade serous ovarian tumor cells modulate NK cell function to create an immune-tolerant microenvironment. Cell Rep 2021;36(9). [DOI:10.1016/j.celrep.2021.109632] [PMID] []
17. Bittencourt RAdC, Pereira HR, Felisbino SL, Murador P, Oliveira APEd, Deffune E. Isolation of bone marrow mesenchymal stem cells. Acta Ortopédica Brasileira 2006;14:22-4. [DOI:10.1590/S1413-78522006000100004]
18. Beyer Nardi N, da Silva Meirelles L. Mesenchymal stem cells: isolation, in vitro expansion and characterization. Stem Cells 2006:249-82. [DOI:10.1007/3-540-31265-X_11]
19. Zappia E, Casazza S, Pedemonte E, Benvenuto F, Bonanni I, Gerdoni E, et al. Mesenchymal stem cells ameliorate experimental autoimmune encephalomyelitis inducing T-cell anergy. Blood 2005;106(5):1755-61. [DOI:10.1182/blood-2005-04-1496] [PMID]
20. Soleimani M, Nadri S. A protocol for isolation and culture of mesenchymal stem cells from mouse bone marrow. Nat Protoc 2009;4(1):102-6. [DOI:10.1038/nprot.2008.221] [PMID]
21. Waterman RS, Tomchuck SL, Henkle SL, Betancourt AM. A new mesenchymal stem cell (MSC) paradigm: polarization into a pro-inflammatory MSC1 or an Immunosuppressive MSC2 phenotype. PLoS One 2010;5(4):e10088. [DOI:10.1371/journal.pone.0010088] [PMID] []
22. Boyum A. Isolation of mononuclear cells and granulocytes from human blood. Scand J Clin Lab Invest 1968;21:77-89. [PMID]
23. Piontek GE, Taniguchi K, Ljunggren H, Grönberg A, Kiessling R, Klein G, et al. YAC-1 MHC class I variants reveal an association between decreased NK sensitivity and increased H-2 expression after interferon treatment or in vivo passage. J Immunol 1985;135(6):4281-8. [DOI:10.4049/jimmunol.135.6.4281] [PMID]
24. Giuliani M, Bennaceur-Griscelli A, Nanbakhsh A, Oudrhiri N, Chouaib S, Azzarone B, et al. TLR ligands stimulation protects MSC from NK killing. Stem Cells 2014;32(1):290-300. [DOI:10.1002/stem.1563] [PMID]
25. Gieseke F, Böhringer J, Bussolari R, Dominici M, Handgretinger R, Müller I. Human multipotent mesenchymal stromal cells use galectin-1 to inhibit immune effector cells. Blood 2010;116(19):3770-9. [DOI:10.1182/blood-2010-02-270777] [PMID]
26. Bunnell BA, Betancourt AM, Sullivan DE. New concepts on the immune modulation mediated by mesenchymal stem cells. Stem Cell Res Ther 2010;1:1-6. [DOI:10.1186/scrt34] [PMID] []
27. Keating A. Mesenchymal stromal cells: new directions. Cell Stem Cell 2012;10(6):709-16. [DOI:10.1016/j.stem.2012.05.015] [PMID]
28. Chen K, Wang D, Du WT, Han Z-B, Ren H, Chi Y, et al. Human umbilical cord mesenchymal stem cells hUC-MSCs exert immunosuppressive activities through a PGE2-dependent mechanism. Clin Immunol 2010;135(3):448-58. [DOI:10.1016/j.clim.2010.01.015] [PMID]
29. Bouffi C, Bony C, Courties G, Jorgensen C, Noel D. IL-6-dependent PGE2 secretion by mesenchymal stem cells inhibits local inflammation in experimental arthritis. PLoS One 2010;5(12):e14247. [DOI:10.1371/journal.pone.0014247] [PMID] []
30. Zhao X, Liu D, Gong W, Zhao G, Liu L, Yang L, et al. The toll-like receptor 3 ligand, poly (I: C), improves immunosuppressive function and therapeutic effect of mesenchymal stem cells on sepsis via inhibiting MiR-143. Stem Cells 2014;32(2):521-33. [DOI:10.1002/stem.1543] [PMID]
31. Sotiropoulou PA, Perez SA, Gritzapis AD, Baxevanis CN, Papamichail M. Interactions between human mesenchymal stem cells and natural killer cells. Stem Cells 2006;24(1):74-85. [DOI:10.1634/stemcells.2004-0359] [PMID]
32. Spaggiari GM, Capobianco A, Becchetti S, Mingari MC, Moretta L. Mesenchymal stem cell-natural killer cell interactions: evidence that activated NK cells are capable of killing MSCs, whereas MSCs can inhibit IL-2-induced NK-cell proliferation. Blood 2006;107(4):1484-90. [DOI:10.1182/blood-2005-07-2775] [PMID]
33. Darlan DM, Munir D, Putra A, Alif I, Amalina ND, Jusuf NK, et al. Revealing the decrease of indoleamine 2, 3-dioxygenase as a major constituent for B cells survival post-mesenchymal stem cells co-cultured with peripheral blood mononuclear cell (PBMC) of systemic lupus erythematosus (SLE) patients. Med Glasnik 2022;19(1). [DOI:10.17392/1414-21] [PMID]
34. Tobin LM, Healy M, English K, Mahon BP. Human mesenchymal stem cells suppress donor CD4+ T cell proliferation and reduce pathology in a humanized mouse model of acute graft-versus-host disease. Clin Exp Immunol 2013;172(2):333-48. [DOI:10.1111/cei.12056] [PMID] []
35. Rozenberg A, Rezk A, Boivin M-N, Darlington PJ, Nyirenda M, Li R, et al. Human mesenchymal stem cells impact Th17 and Th1 responses through a prostaglandin E2 and myeloid-dependent mechanism. Stem Cells Transl Med 2016;5(11):1506-14. [DOI:10.5966/sctm.2015-0243] [PMID] []
36. Uccelli A, Moretta L, Pistoia V. Immunoregulatory function of mesenchymal stem cells. Eur J Immunol 2006;36(10):2566-73. [DOI:10.1002/eji.200636416] [PMID]
37. Blanco B, Herrero‐Sánchez MdC, Rodríguez‐Serrano C, García‐Martínez ML, Blanco JF, Muntión S, et al. Immunomodulatory effects of bone marrow versus adipose tissue‐derived mesenchymal stromal cells on NK cells: Implications in the transplantation setting. Eur J [google scholar]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
