دوره 34، شماره 2 - ( 2-1402 )
جلد 34 شماره 2 صفحات 89-80 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Shokrzadeh M, Torraj M, Mortazavi P, Motafeghi F. LYCOPENE AND L-CARNITINE ATTENUATE FLUOXETINE-INDUCED CYTOTOXICITY AND OXIDATIVE STRESS IN NORMAL GINGIVAL CELLS: A PRELIMINARY ANALYSIS. Studies in Medical Sciences 2023; 34 (2) :80-89
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5990-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5990-fa.html
شکرزاده محمد، تورج متین، مرتضوی پرهام، متفقی فرزانه. لیکوپن و ال کارنیتین سمیت سلولی و استرس اکسیداتیو ناشی از فلوکستین را در سلول‌های لثه نرمال کاهش می‌دهند: یک تحلیل مقدماتی. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1402; 34 (2) :80-89
پژوهشگر فوق دکتری، مرکز تحقیقات غدد تولید مثل، پژوهشکده علوم غدد و متابولیسم، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران. دکترای سم شناسی، گروه فارماکولوژی و سم شناسی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران (نویسنده مسئول) ، farzaneh.motafeghi@gmail.com
چکیده: (2351 مشاهده)
پیش‌زمینه و هدف: زمینه و هدف: سمیت سلولی ناشی از فلوکستین شامل مکانیسم های متعددی از جمله افزایش تولید گونه های فعال اکسیژن (ROS) و کاهش ظرفیت آنتی اکسیدانی با کاهش سطوح GSH و بوتیونین سولفوکسیمین (BSO) است که با افزایش سطوح پروتئین کربونیل ها، مالون دی آلدئید مرتبط است. فعالیت GST، سطوح NO و NF-KB، و آنیون های سوپراکسید. هدف از این مطالعه تأثیر لیکوپن و ال-کارنیتین بر سمیت سلولی و استرس اکسیداتیو ناشی از فلوکستین بر روی رده سلولی نرمال لثه بود.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه از غلظت‌های 50، 100 و 200 میکرومولار ال-کارنیتین و لیکوپن به عنوان آنتی‌اکسیدان برای بررسی سمیت سلولی ناشی از فلوکستین و با اندازه‌گیری عوامل استرس اکسیداتیو مانند ROS و پراکسیداسیون لیپیدی (LPO) استفاده شد. تجزیه و تحلیل آماری با استفاده از نرم افزار Prism V8 انجام شد و p<0.05 معنی دار در نظر گرفته شد.
یافته ها: نتایج نشان داد که فلوکستین با اختلال در عملکرد میتوکندری، استرس اکسیداتیو سلولی را القا می کند. درمان همزمان سلول ها با فلوکستین، لیکوپن و ال-کارنیتین به طور موثری سمیت سلولی ناشی از فلوکستین را مهار کرد، رادیکال های آزاد را از بین برد و از آسیب غشای لیپیدی جلوگیری کرد (p<0.05).
بحث و نتیجه گیری: این مطالعه نشان می دهد که فلوکستین می تواند باعث آسیب سلولی شود. بررسی‌های بیشتر باید بر روی جمعیت‌های بزرگ‌تر بیمارانی که دوره‌های درمانی طولانی‌تری با داروهای ضدافسردگی دارند، انجام شود تا سمیت سلولی آنها ارزیابی شود. این یافته ها همچنین نشان می دهد که لیکوپن و ال-کارنیتین دارای اثرات آنتی اکسیدانی قوی در کاهش سمیت سلولی ناشی از فلوکستین با از بین بردن رادیکال های آزاد و جلوگیری از آسیب غشای لیپیدی هستند.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه از غلظت‌های 50، 100 و 200 میکرومولار ال-کارنیتین و لیکوپن به عنوان آنتی‌اکسیدان برای بررسی سمیت سلولی ناشی از فلوکستین و با اندازه‌گیری عوامل استرس اکسیداتیو مانند ROS و پراکسیداسیون لیپیدی (LPO) استفاده شد. تجزیه و تحلیل آماری با استفاده از نرم افزار Prism V8 انجام شد و p<0.05 معنی دار در نظر گرفته شد.
یافته ها: نتایج نشان داد که فلوکستین با اختلال در عملکرد میتوکندری، استرس اکسیداتیو سلولی را القا می کند. درمان همزمان سلول ها با فلوکستین، لیکوپن و ال-کارنیتین به طور موثری سمیت سلولی ناشی از فلوکستین را مهار کرد، رادیکال های آزاد را از بین برد و از آسیب غشای لیپیدی جلوگیری کرد (p<0.05).
بحث و نتیجه گیری: این مطالعه نشان می دهد که فلوکستین می تواند باعث آسیب سلولی شود. بررسی‌های بیشتر باید بر روی جمعیت‌های بزرگ‌تر بیمارانی که دوره‌های درمانی طولانی‌تری با داروهای ضدافسردگی دارند، انجام شود تا سمیت سلولی آنها ارزیابی شود. این یافته ها همچنین نشان می دهد که لیکوپن و ال-کارنیتین دارای اثرات آنتی اکسیدانی قوی در کاهش سمیت سلولی ناشی از فلوکستین با از بین بردن رادیکال های آزاد و جلوگیری از آسیب غشای لیپیدی هستند.
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
مسمومیت
فهرست منابع
1. Wong D, Bymaster F, Horng J, Molloy B. A new selective inhibitor for uptake of serotonin into synaptosomes of rat brain: 3-(p-trifluoromethylphenoxy). N-methyl-3-phenylpropylamine. J Pharmacol Exp Ther 1975;193(3):804-11. [] [PMID]
2. Sánchez C, Hyttel J. Comparison of the effects of antidepressants and their metabolites on reuptake of biogenic amines and on receptor binding. Cell Mol Neurobiol 1999;19:467-89. [DOI:10.1023/A:1006986824213] [PMID]
3. Gobert A, Rivet JM, Cistarelli L, Millan M. Potentiation of the fluoxetine‐induced increase in dialysate levels of serotonin (5‐HT) in the frontal cortex of freely moving rats by combined blockade of 5‐HT1A and 5‐HT1B receptors with WAY 100,635 and GR 127,935. J Neurochem 1997;68(3):1159-63. [DOI:10.1046/j.1471-4159.1997.68031159.x] [PMID]
4. Tao R, Fray A, Aspley S, Brammer R, Heal D, Auerbach S. Effects on serotonin in rat hypothalamus of D-fenfluramine, aminorex, phentermine and fluoxetine. Eur J Pharmacol 2002;445(1-2):69-81. [DOI:10.1016/S0014-2999(02)01751-X] [PMID]
5. Ali M, Sharaf A, El-Deen O, El-Menshay O, Bakery S, editors. Genotoxic effects of fluoxetine on the chromosomes of bone marrow cells of pregnant mice. 39th Annual International Meeting, Int Assoc Foren Toxicol; 2001.
6. Zlatković J, Todorović N, Tomanović N, Bošković M, Djordjević S, Lazarević-Pašti T, et al. Chronic administration of fluoxetine or clozapine induces oxidative stress in rat liver: a histopathological study. Eur J Pharm Sci 2014;59:20-30. [DOI:10.1016/j.ejps.2014.04.010] [PMID]
7. Balmus IM, Ciobica A, Antioch I, Dobrin R, Timofte D. Oxidative stress implications in the affective disorders: main biomarkers, animal models relevance, genetic perspectives, and antioxidant approaches. Oxid Med Cell Longev 2016;2016. [DOI:10.1155/2016/3975101] [PMID] [PMCID]
8. Mundalil Vasu M, Anitha A, Takahashi T, Thanseem I, Iwata K, Asakawa T, et al. Fluoxetine increases the expression of miR-572 and miR-663a in human neuroblastoma cell lines. PLoS One 2016;11(10):e0164425. [DOI:10.1371/journal.pone.0164425] [PMID] [PMCID]
9. Lee CS, Kim YJ, Jang ER, Kim W, Myung SC. Fluoxetine Induces Apoptosis in Ovarian Carcinoma Cell Line OVCAR‐3 Through Reactive Oxygen Species‐Dependent Activation of Nuclear Factor‐κB. Basic Clin Pharmacol Toxicol 2010;106(6):446-53. [DOI:10.1111/j.1742-7843.2009.00509.x] [PMID]
10. Aleson-Carbonell L, Fernández-López J, Pérez-Alvarez J, Kuri V. Characteristics of beef burger as influenced by various types of lemon albedo. Innov Food Sci Emerg Technol 2005;6(2):247-55. [DOI:10.1016/j.ifset.2005.01.002]
11. James A, Ryan J, Parkman H. Effects of the selective serotonin reuptake inhibitor, fluoxetine, on regional gastric contractility 1. J Neurogastroenterol Motil 2005;17(1):76-82. [DOI:10.1111/j.1365-2982.2004.00613.x] [PMID]
12. Camacho‐Alonso F, López‐Jornet P, Tudela‐Mulero M. Synergic effect of curcumin or lycopene with irradiation upon oral squamous cell carcinoma cells. Oral Dis 2013;19(5):465-72. [DOI:10.1111/odi.12025] [PMID]
13. Halford JC, Harrold JA, Lawton CL, Blundell JE. Serotonin (5-HT) drugs: effects on appetite expression and use for the treatment of obesity. Curr Drug Targets 2005;6(2):201-13. [DOI:10.2174/1389450053174550] [PMID]
14. Motafeghi F, Habibi E, Firozjaei M, Eghbali M, Mortazavi P, Salmanmahiny A, et al. The Cytotoxic Effect of the Tarragon (Artemisia dracunculus L.) Hydroalcoholic Extract on the HT-29, MKN45, and MCF-7 Cell Lines. Pharm Biomed Res 2023;9(1):27-36. [DOI:10.32598/PBR.9.1.1025.2]
15. Shokrzadeh M, Mortazavi P, Moghadami A, Khayambashi B, Motafeghi F. Synergistic antiproliferative and anticancer activity of carotenoid lutein or coenzyme Q10 in combination with doxorubicin on the MCF7 cell line. Appl In Vitro Toxicol 2021;7(4):167-74. [DOI:10.1089/aivt.2021.0008]
16. Motafeghi F, Shahsavari R, Mortazavi P, Shokrzadeh M. Anticancer effect of paroxetine and amitriptyline on HT29 and A549 cell lines. Toxicol In Vitro 2023;87:105532. [DOI:10.1016/j.tiv.2022.105532] [PMID]
17. Motafeghi F, Mortazavi P, Ghassemi-Barghi N, Zahedi M, Shokrzadeh M. Dexamethasone as an anti-cancer or hepatotoxic. Toxicol Mech Methods 2023;33(2):161-71. [DOI:10.1080/15376516.2022.2105183] [PMID]
18. Motafeghi F, Khayambashi B, Mortazavi P, Eghbali M, Salmanmahiny A, Shahsavari R, et al. Synergistic Effect of Selenium/Zinc with Sulfasalazine on the Human Colorectal Cancer Cell Line (HT-29). Appl In Vitro Toxicol 2023;9(1):3-12. [DOI:10.1089/aivt.2022.0007]
19. Motafeghi F, Mortazavi P, Salman Mahiny AH, Abtahi MM, Shokrzadeh M. The role of ginger's extract and N-acetylcysteine against docetaxel-induced oxidative stress and genetic disorder. Drug Chem Toxicol 2022:1-8. [DOI:10.1080/01480545.2022.2075377] [PMID]
20. Motafeghi F, Mortazavi P, Mahdavi M, Shokrzadeh M. Cellular effects of epsilon toxin on the cell viability and oxidative stress of normal and lung cancer cells. Microb Pathog 2022;169:105649. [DOI:10.1016/j.micpath.2022.105649] [PMID]
21. Slamon DN, Ward TH, Butler J, Pentreath VW. Assessment of DNA damage in C6 glioma cells after antidepressant treatment using an alkaline comet assay. Arch Toxicol 2001;75:243-50. [DOI:10.1007/s002040100228] [PMID]
22. Herbet M, Gawrońska-Grzywacz M, Jagiełło-Wójtowicz E. Evaluation of selected biochemical parameters of oxidative stress in rats pretreated with rosuvastatin and fluoxetine. Acta Poloniae Pharmaceutica 2015;72(2):261-5. [PMID]
23. Dave A, Parande F, Park E-J, Pezzuto JM. Phytochemicals and cancer chemoprevention. J Cancer Metas Treat 2020;6:46. [DOI:10.20517/2394-4722.2020.106]
24. Di Mascio P, Kaiser S, Sies H. Lycopene as the most efficient biological carotenoid singlet oxygen quencher. Arch Biochem Biophys 1989;274(2):532-8. [DOI:10.1016/0003-9861(89)90467-0] [PMID]
25. Muzandu K, Ishizuka M, Sakamoto KQ, Shaban Z, El Bohi K, Kazusaka A, et al. Effect of lycopene and β-carotene on peroxynitrite-mediated cellular modifications. Toxicol Appl Pharmacol 2006;215(3):330-40. [DOI:10.1016/j.taap.2006.03.006] [PMID]
26. Park YO, Hwang E-S, Moon TW. The effect of lycopene on cell growth and oxidative DNA damage of Hep3B human hepatoma cells. Biofactors 2005;23(3):129-39. [DOI:10.1002/biof.5520230302] [PMID]
27. Rao AV, Agarwal S. Bioavailability and in vivo antioxidant properties of lycopene from tomato products and their possible role in the prevention of cancer. Nutr Cancer 1998;31(3):199-203. Available from: http://dx.doi.org/10.1080/01635589809514703 [DOI:10.1080/01635589809514703] [PMID]
28. Saberi AH, Kowsari M. Protective Effects of Lycopene on the γ-radiation Induced Chromosomal Damage and Cell Killing in Cultured Human Fibroblast Cells. Jundishapur Sci Med J 2011;10(5):573-81. [Google Scholar]
29. Ateşşahin A, Karahan İ, Türk G, Gür S, Yılmaz S, Çeribaşı AO. Protective role of lycopene on cisplatin-induced changes in sperm characteristics, testicular damage and oxidative stress in rats. Reprod Toxicol 2006;21(1):42-7. [DOI:10.1016/j.reprotox.2005.05.003] [PMID]
30. Aslanturk OS, Celik TA. Preventive effect of lycopene on chromosome aberrations in Allium cepa. Pakistan J Bil Sci 2005;8(3):482-6. [DOI:10.3923/pjbs.2005.482.486]
31. Riso P, Pinder A, Santangelo A, Porrini M. Does tomato consumption effectively increase the resistance of lymphocyte DNA to oxidative damage? Am J Clin Nutr 1999;69(4):712-8. [DOI:10.1093/ajcn/69.4.712] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
