دوره 35، شماره 7 - ( 7-1403 )
جلد 35 شماره 7 صفحات 578-568 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Salimi Kia I, sheikholeslami S, Ghaffarian Bahrmann A, Mohammadi M, Darabinejad M, Mohammadi H. INVESTIGATING THE PROTECTIVE EFFECT OF LUTEOLIN ON CHOLEMIC NEPHROPATHY IN CHOLESTATIC RATS. Studies in Medical Sciences 2024; 35 (7) :568-578
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6297-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6297-fa.html
سلیمی کیا ایرج، شیخ الاسلامی شادی، غفاریان بهرمان علی، محمدی مهسا، دارابی نژاد مصطفی، محمدی حمیدرضا. بررسی اثر حفاظتی لوتئولین بر عارضه کولمیک نفروپاتی در موش‌های صحرائی کلستاتیک. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1403; 35 (7) :568-578
ایرج سلیمی کیا 
، شادی شیخ الاسلامی ، علی غفاریان بهرمان ، مهسا محمدی ، مصطفی دارابی نژاد ، حمیدرضا محمدی*
، شادی شیخ الاسلامی ، علی غفاریان بهرمان ، مهسا محمدی ، مصطفی دارابی نژاد ، حمیدرضا محمدی*
استادیار فارماکولوژی و سم شناسی، دانشکده داروسازی، مرکز تحقیقات داروهای گیاهی رازی، دانشگاه علوم پزشکی لرستان، خرم آباد، ایران (نویسنده مسئول) ، hamidrezamohammadi65@yahoo.com
چکیده: (802 مشاهده)
پیش‌زمینه و هدف: کولمیک نفروپاتی یکی از عوارض مهم و جدی در شرایط آسیب‌های مزمن کبدی و بسته شدن مجاری صفراوی است. پیدا کردن راهکارهای داروئی جهت تخفیف این عارضه و یا جلوگیری از بروز آن می‌تواند از اهمیت بالینی برخوردار باشد. ازآنجاکه لوتئولین یک آنتی‌اکسیدان است و یکی از مکانیسم‌های ایجاد کولمیک نفروپاتی القا استرس اکسیداتیو است، این پژوهش با هدف بررسی اثر حفاظتی لوتئولین (LUT) بر عارضه کولمیک نفروپاتی در موش‌های صحرائی کلستاتیک طراحی شده است.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه تجربی 50 رت نر از نژاد ویستار استفاده شد. القای کلستاز از طریق بستن مجاری مشترک صفراوی (BDL) انجام شد. رت‌ها به‌صورت تصادفی در 5 گروه 10 تایی به شرح ذیل تقسیم شدند؛ یک گروه کنترل، یک گروه BDL، گروه‌هایی که علاوه بر BDL دوزهای مختلف LUT mg/kg/day) 15،5 و 30) روزانه به‌صورت گاواژ برای مدت 14 روز دریافت کردند. پس از پایان این مداخله تأثیر القای کلستاز و اثرات حفاظتی LUT بر فاکتورهای سرمی، ادرار و شاخص‌های استرس اکسیداتیو بافت کلیه موردبررسی قرار گرفت.
یافته‌ها: بررسی حاضر نشان داد که سطح شاخص‌های سرمی BUN) و (Cr، استرس اکسیداتیو (MDA و ROS) در موش‌های کلستاتیک نسبت به گروه‌های کنترل به‌طور معنی‌داری افزایش یافت (P < 0.001). همچنین، فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی (CAT, SOD, GPx) در موش‌های کلستاتیک نسبت به گروهای کنترل به‌طور معناداری کاهش یافته بود (P < 0.001).
بحث و نتیجه‌گیری: به نظر می‌رسد که LUT می‌تواند از طریق کاهش استرس اکسیداتیو و بهبود فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی به‌عنوان یک کاندید امیدوارکننده برای پیشگیری و درمان آسیب کلیوی ناشی از کلستاز شود.
مواد و روش‌ها: در این مطالعه تجربی 50 رت نر از نژاد ویستار استفاده شد. القای کلستاز از طریق بستن مجاری مشترک صفراوی (BDL) انجام شد. رت‌ها به‌صورت تصادفی در 5 گروه 10 تایی به شرح ذیل تقسیم شدند؛ یک گروه کنترل، یک گروه BDL، گروه‌هایی که علاوه بر BDL دوزهای مختلف LUT mg/kg/day) 15،5 و 30) روزانه به‌صورت گاواژ برای مدت 14 روز دریافت کردند. پس از پایان این مداخله تأثیر القای کلستاز و اثرات حفاظتی LUT بر فاکتورهای سرمی، ادرار و شاخص‌های استرس اکسیداتیو بافت کلیه موردبررسی قرار گرفت.
یافته‌ها: بررسی حاضر نشان داد که سطح شاخص‌های سرمی BUN) و (Cr، استرس اکسیداتیو (MDA و ROS) در موش‌های کلستاتیک نسبت به گروه‌های کنترل به‌طور معنی‌داری افزایش یافت (P < 0.001). همچنین، فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی (CAT, SOD, GPx) در موش‌های کلستاتیک نسبت به گروهای کنترل به‌طور معناداری کاهش یافته بود (P < 0.001).
بحث و نتیجه‌گیری: به نظر می‌رسد که LUT می‌تواند از طریق کاهش استرس اکسیداتیو و بهبود فعالیت آنزیم‌های آنتی‌اکسیدانی به‌عنوان یک کاندید امیدوارکننده برای پیشگیری و درمان آسیب کلیوی ناشی از کلستاز شود.
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
داروسازی
فهرست منابع
1. Ozougwu JC. Physiology of the liver. Int J Res Pharm Biosci 2017;4(8):13-24. [DOI:10.20546/ijcrbp.2017.411.004]
2. Swann JR, Want EJ, Geier FM, Spagou K, Wilson ID, Sidaway JE, et al. Systemic gut microbial modulation of bile acid metabolism in host tissue compartments. Proc Natl Acad Sci USA 2011;108(supplement_1):4523-30. [DOI:10.1073/pnas.1006734107] [PMID] []
3. Chiang JY. Regulation of bile acid synthesis: pathways, nuclear receptors, and mechanisms. J Hepatol 2004;40(3):539-51. [DOI:10.1016/j.jhep.2003.11.006] [PMID]
4. Krones E, Wagner M, Eller K, Rosenkranz AR, Trauner M, Fickert P. Bile acid-induced cholemic nephropathy. Dig Dis 2015;33(3):367-75. [DOI:10.1159/000371689] [PMID]
5. Fickert P, Rosenkranz AR, editors. Cholemic nephropathy reloaded. Semin Liver Dis; 2020: Thieme Medical Publishers. [DOI:10.1055/s-0039-1698826] [PMID]
6. Krones E, Pollheimer MJ, Rosenkranz AR, Fickert P. Cholemic nephropathy - Historical notes and novel perspectives. Biochim Biophys Acta Mol Basis Dis 2018;1864(4, Part B):1356-66. [DOI:10.1016/j.bbadis.2017.08.028] [PMID]
7. Abdoli N, Sadeghian I, Azarpira N, Ommati MM, Heidari R. Taurine mitigates bile duct obstruction-associated cholemic nephropathy: effect on oxidative stress and mitochondrial parameters. Clin Exp Hepatol 2021;7(1):30-40. [DOI:10.5114/ceh.2021.104675] [PMID] []
8. Ommati MM, Mohammadi H, Mousavi K, Azarpira N, Farshad O, Dehghani R, et al. Metformin alleviates cholestasis-associated nephropathy through regulating oxidative stress and mitochondrial function. Liver Res 2021;5(3):171-80. [DOI:10.1016/j.livres.2020.12.001]
9. Jashni Z, Ghaffari Nasab M, Salimi Kia I, Maleki A, Abdollahi S, Mohammadi H. Investigating the Protective Effects of Rutin on Cholemic Nephropathy in Cholestatic Rats. J Mazandaran Univ Med Sci 2024;34(238):72-80. [URL:]
10. Avila-Carrasco L, García-Mayorga EA, Díaz-Avila DL, Garza-Veloz I, Martinez-Fierro ML, González-Mateo GT. Potential therapeutic effects of natural plant compounds in kidney disease. Molecules 2021;26(20):6096. [DOI:10.3390/molecules26206096] [PMID] []
11. Hajializadeh Z, Nasri S, Kaeidi A, Sheibani V, Rasoulian B, Esmaeili-Mahani S. Inhibitory effect of Thymus caramanicus Jalas on hyperglycemia-induced apoptosis in in vitro and in vivo models of diabetic neuropathic pain. J Ethnopharmacol 2014;153(3):596-603. [DOI:10.1016/j.jep.2014.02.049] [PMID]
12. Butterfield DA, Castegna A, Pocernich CB, Drake J, Scapagnini G, Calabrese V. Nutritional approaches to combat oxidative stress in Alzheimer's disease. J Nutr Biochem 2002;13(8):444-61. [DOI:10.1016/S0955-2863(02)00205-X] [PMID]
13. Haghani F, Arabnezhad M-R, Mohammadi S, Ghaffarian-Bahraman A. Aloe vera and streptozotocin-induced diabetes mellitus. Rev Bras Farmacogn 2022;32(2):174-87. [DOI:10.1007/s43450-022-00231-3] [PMID] []
14. Boots AW, Haenen GR, Bast A. Health effects of quercetin: from antioxidant to nutraceutical. Eur J Pharmacol 2008;585(2-3):325-37. [DOI:10.1016/j.ejphar.2008.03.008] [PMID]
15. Kang KA, Piao MJ, Ryu YS, Hyun YJ, Park JE, Shilnikova K, et al. Luteolin induces apoptotic cell death via antioxidant activity in human colon cancer cells. Int J Oncol 2017;51(4):1169-78. [DOI:10.3892/ijo.2017.4091] [PMID]
16. Imran M, Rauf A, Abu-Izneid T, Nadeem M, Shariati MA, Khan IA, et al. Luteolin, a flavonoid, as an anticancer agent: A review. Biomed Pharmacother 2019;112:108612. [DOI:10.1016/j.biopha.2019.108612] [PMID]
17. Terzioglu D, Uslu L, Simsek G, Atukeren P, Erman H, Gelisgen R, et al. The effects of hyperbaric oxygen treatment on total antioxidant capacity and prolidase activity after bile duct ligation in rats. J Investig Surg 2017;30(6):376-82. [DOI:10.1080/08941939.2016.1257666] [PMID]
18. Doustimotlagh AH, Dehpour AR, Etemad-Moghadam S, Alaeddini M, Ostadhadi S, Golestani A. A study on OPG/RANK/RANKL axis in osteoporotic bile duct-ligated rats and the involvement of nitrergic and opioidergic systems. Res Pharm Sci 2018;13(3):239-49. [DOI:10.4103/1735-5362.228954] [PMID] []
19. Ahmadi SM, Farhoosh R, Sharif A, Rezaie M. Structure‐antioxidant activity relationships of luteolin and catechin. J Food Sci 2020;85(2):298-305. [DOI:10.1111/1750-3841.14994] [PMID]
20. Kaler B, Karram T, Morgan WA, Bach PH, Yousef IM, Bomzon A. Are bile acids involved in the renal dysfunction of obstructive jaundice? An experimental study in bile duct ligated rats. Ren Fail 2004;26(5):507-16. [DOI:10.1081/JDI-200031753] [PMID]
21. Lee J, Azzaroli F, Wang L, Soroka CJ, Gigliozzi A, Setchell KD, et al. Adaptive regulation of bile salt transporters in kidney and liver in obstructive cholestasis in the rat. Gastroenterology 2001;121(6):1473-84. [DOI:10.1053/gast.2001.29608] [PMID]
22. Bomzon A, Holt S, Moore K, editors. Bile acids, oxidative stress, and renal function in biliary obstruction. Semin Nephrol; 1997. [PMID]
23. Omidi M, Ghafarian‐Bahraman A, Mohammadi‐Bardbori A. GSH/GSSG redox couple plays central role in aryl hydrocarbon receptor‐dependent modulation of cytochrome P450 1A1. J Biochem Mol Toxicol 2018;32(7):e22164. [DOI:10.1002/jbt.22164] [PMID]
24. Ghaffarian-Bahraman A, Shahroozian I, Jafari A, Ghazi-Khansari M. Protective effect of magnesium and selenium on cadmium toxicity in the isolated perfused rat liver system. Acta Med Iran 2014:872-8. [PMID]
25. Garcia-Caparros P, De Filippis L, Gul A, Hasanuzzaman M, Ozturk M, Altay V, et al. Oxidative stress and antioxidant metabolism under adverse environmental conditions: a review. Bot Rev 2021;87:421-66. [DOI:10.1007/s12229-020-09231-1]
26. Zhang L, Han YJ, Zhang X, Wang X, Bao B, Qu W, et al. Luteolin reduces obesity-associated insulin resistance in mice by activating AMPKα1 signalling in adipose tissue macrophages. Diabetologia 2016;59(10):2219-28. [DOI:10.1007/s00125-016-4039-8] [PMID]
27. Wang G, Li W, Lu X, Bao P, Zhao X. Luteolin ameliorates cardiac failure in type I diabetic cardiomyopathy. J Diabetes Complications 2012;26(4):259-65. [DOI:10.1016/j.jdiacomp.2012.04.007] [PMID]
28. Qiao H, Dong L, Zhang X, Zhu C, Zhang X, Wang L, et al. Protective effect of luteolin in experimental ischemic stroke: upregulated SOD1, CAT, Bcl-2 and claudin-5, down-regulated MDA and Bax expression. Neurochem Res 2012;37:2014-24. [DOI:10.1007/s11064-012-0822-1] [PMID]
29. Cormier M, Ghouili F, Roumaud P, Bauer W, Touaibia M, Martin LJ. Influences of flavones on cell viability and cAMP-dependent steroidogenic gene regulation in MA-10 Leydig cells. Cell Biol Toxicol 2018;34(1):23-38. [DOI:10.1007/s10565-017-9395-8] [PMID]
30. Chen H-I, Hu W-S, Hung M-Y, Ou H-C, Huang S-H, Hsu P-T, et al. Protective effects of luteolin against oxidative stress and mitochondrial dysfunction in endothelial cells. Nutr Metab Cardiovasc Dis 2020;30(6):1032-43. [DOI:10.1016/j.numecd.2020.02.014] [PMID]
31. Chen D, Shen F, Liu J, Tang H, Teng X, Yang F, et al. Luteolin enhanced antioxidant capability and induced pyroptosis through NF-κB/NLRP3/Caspase-1 in splenic lymphocytes exposure to ammonia. Sci Total Environ 2024;919:170699. [DOI:10.1016/j.scitotenv.2024.170699] [PMID]
32. Azeem M, Hanif M, Mahmood K, Ameer N, Chughtai FRS, Abid U. An insight into anticancer, antioxidant, antimicrobial, antidiabetic and anti-inflammatory effects of quercetin: A review. Polym Bull 2023;80(1):241-62. [DOI:10.1007/s00289-022-04091-8] [PMID] []
33. Chen L-Y, Cheng H-L, Liao C-K, Kuan Y-H, Liang T-J, Tseng T-J, et al. Luteolin improves nephropathy in hyperglycemic rats through anti-oxidant, anti-inflammatory, and anti-apoptotic mechanisms. J Funct Foods 2023;102:105461. [DOI:10.1016/j.jff.2023.105461]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
