دوره 34، شماره 9 - ( آذر 1402 )
جلد 34 شماره 9 صفحات 494-486 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Asl Soleimani E, Mojtahedi A, Zaboli F, Kaboosi H. Hypervirulence of Klebsiella Pneumoniae Strains Producing Carbapenemase and Extended-Spectrum Beta-Lactamase (ESBLs) Isolated from Hospitals of Rasht, Iran. Studies in Medical Sciences 2023; 34 (9) :486-494
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6041-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-6041-fa.html
اصل سلیمانی الهام، مجتهدی علی، زابلی فاطمه، کابوسی حامی. هایپر ویرولانس در گونه‌های کلبسیلا پنومونیه مولد کارباپنماز و
بالاکتامازهای وسیع‌الطیف، جدا شده از بیمارستان‌های رشت. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1402; 34 (9) :486-494
گروه میکروب شناسی، دانشکده پزشکی، دانشگاه علوم پزشکی ایران، تهران، ایران ، mojtahedii.ali@gmail.com
چکیده: (1195 مشاهده)
پیش‌زمینه و هدف: ایزوله‌های جدید به شدت بیماری‌زا (هایپرویرولنت) در کلبسیلا پنومونیه در چند سال اخیر به وجود آمده‌اند و منجر به ایجاد عفونت‌های تهدیدکننده حیات در افراد جوان و سالم گردیده‌اند. در مطالعه حاضر فراوانی تولید بتالاکتامازهای وسیع‌الطیف و کارباپنماز در ایزوله‌های جدید با بیماری‌زایی بالا کلبسیلا پنمونیه جداشده از بیماران بررسی گردید.
مواد و روش‌ها: این مطالعه مقطعی بر روی نمونه‌های بالینی جداشده از بیماران بستری در بیمارستان‌های رازی، پورسینا، رسول اکرم، گلسار و الزهرا شهر رشت انجام گردید. برای تأیید هویت باکتری‌های کلبسیلا پنومونیه از روش‌های استاندارد میکروبیولوژی و مولکولی استفاده گردید. برای شناسایی سویه‌های باکتری با بیماری‌زایی بالا از تست استرینگ استفاده شد. برای تعیین فنوتیپی سویه‌های تولیدکننده ESBL از تست CDT[1] استفاده شد. سپس تعیین حضور ژن کد کننده کارباپنماز (NDM-1) و همچنین توالی یابی سویه‌های به شدت بیماری‌زا به روش PCR انجام شد.
یافته‌ها: در این مطالعه، 158 ایزوله کلبسیلا پنومونیه جداشده از نمونه‌های مختلف جمع‌آوری و موردبررسی قرار گرفتند. درمجموع تعداد 55 ایزوله (8/34 درصد) دارای تست مثبت استرینگ بودند و به‌عنوان هایپرویروانت مشخص شدند. از مجموع 55 سویه‌ی کلبسیلا پنومونیه جداشده، 16 (1/29 درصد) ایزوله ازنظر فنوتیپی ESBL مثبت بودند. نتایج نشان داد که فقط ۲ ایزوله (6/3 درصد) دارای ژن NDM-1 بودند. نتایج، فراوانی توالی یابی شایع در ایزوله‌های به شدت بیماری‌زا را 1/9 درصد برای ST258، 1/9 درصد برای ST86 و 6/3 درصد برای ST23 نشان داد. همچنین ST65 در هیچ ایزوله‌ای مشاهده نگردید.
نتیجه‌گیری: مطالعه اخیر نشان داد که ایزوله‌های به شدت بیماری‌زای کلبسیلا پنومونیه با توانایی تولید آنزیم‌های ESBLs و کارباپنماز، فروانی قابل‌توجه ای دارند. بدون شک ظهور سویه‌های با ریسک بالا در منطقه در آینده تهدید جدی برای سیستم سلامت هست.
مواد و روش‌ها: این مطالعه مقطعی بر روی نمونه‌های بالینی جداشده از بیماران بستری در بیمارستان‌های رازی، پورسینا، رسول اکرم، گلسار و الزهرا شهر رشت انجام گردید. برای تأیید هویت باکتری‌های کلبسیلا پنومونیه از روش‌های استاندارد میکروبیولوژی و مولکولی استفاده گردید. برای شناسایی سویه‌های باکتری با بیماری‌زایی بالا از تست استرینگ استفاده شد. برای تعیین فنوتیپی سویه‌های تولیدکننده ESBL از تست CDT[1] استفاده شد. سپس تعیین حضور ژن کد کننده کارباپنماز (NDM-1) و همچنین توالی یابی سویه‌های به شدت بیماری‌زا به روش PCR انجام شد.
یافته‌ها: در این مطالعه، 158 ایزوله کلبسیلا پنومونیه جداشده از نمونه‌های مختلف جمع‌آوری و موردبررسی قرار گرفتند. درمجموع تعداد 55 ایزوله (8/34 درصد) دارای تست مثبت استرینگ بودند و به‌عنوان هایپرویروانت مشخص شدند. از مجموع 55 سویه‌ی کلبسیلا پنومونیه جداشده، 16 (1/29 درصد) ایزوله ازنظر فنوتیپی ESBL مثبت بودند. نتایج نشان داد که فقط ۲ ایزوله (6/3 درصد) دارای ژن NDM-1 بودند. نتایج، فراوانی توالی یابی شایع در ایزوله‌های به شدت بیماری‌زا را 1/9 درصد برای ST258، 1/9 درصد برای ST86 و 6/3 درصد برای ST23 نشان داد. همچنین ST65 در هیچ ایزوله‌ای مشاهده نگردید.
نتیجه‌گیری: مطالعه اخیر نشان داد که ایزوله‌های به شدت بیماری‌زای کلبسیلا پنومونیه با توانایی تولید آنزیم‌های ESBLs و کارباپنماز، فروانی قابل‌توجه ای دارند. بدون شک ظهور سویه‌های با ریسک بالا در منطقه در آینده تهدید جدی برای سیستم سلامت هست.
[1] Combined Disk Test
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
میکروبیولوژی
فهرست منابع
1. Calfee DP. Recent advances in the understanding and management of Klebsiella pneumoniae. F1000Res 2017;6:1760. [DOI:10.12688/f1000research.11532.1] [PMID] []
2. Paczosa MK, Mecsas J. Klebsiella pneumoniae: Going on the Offense with a Strong Defense. Microbiol Mol Biol Rev 2016;80(3):629-61.
https://doi.org/10.1128/MMBR.00078-15 [DOI:10.1128/mmbr.00078-15] [PMID] []
3. Mohd Asri NA, Ahmad S, Mohamud R, Mohd Hanafi N, Mohd Zaidi NF, Irekeola AA, et al. Global Prevalence of Nosocomial Multidrug-Resistant Klebsiella pneumoniae: A Systematic Review and Meta-Analysis. Antibiotics (Basel) 2021;10(12). [DOI:10.3390/antibiotics10121508] [PMID] []
4. Meatherall BL, Gregson D, Ross T, Pitout JD, Laupland KB. Incidence, risk factors, and outcomes of Klebsiella pneumoniae bacteremia. Am J Med 2009;122(9):866-73. [DOI:10.1016/j.amjmed.2009.03.034] [PMID]
5. Chang D, Sharma L, Dela Cruz CS, Zhang D. Clinical Epidemiology, Risk Factors, and Control Strategies of Klebsiella pneumoniae Infection. Front Microbiol 2021;12:750662. [DOI:10.3389/fmicb.2021.750662] [PMID] []
6. Karami-Zarandi M, Rahdar HA, Esmaeili H, Ranjbar R. Klebsiella pneumoniae: an update on antibiotic resistance mechanisms. Future Microbiol 2023;18:65-81. [DOI:10.2217/fmb-2022-0097] [PMID]
7. Samir A, Abdel-Moein KA, Zaher HM. The Public Health Burden of Virulent Extended-Spectrum β-Lactamase-Producing Klebsiella pneumoniae Strains Isolated from Diseased Horses. Vector Borne Zoonotic Dis 2022;22(4):217-24. [DOI:10.1089/vbz.2022.0004] [PMID]
8. Jiang W, Yang W, Zhao X, Wang N, Ren H. Klebsiella pneumoniae presents antimicrobial drug resistance for β-lactam through the ESBL/PBP signaling pathway. Exp Ther Med 2020;19(4):2449-56. [DOI:10.3892/etm.2020.8498]
9. Elmanakhly AR, Bendary MM, Safwat NA, Awad EA, Alhomrani M, Alamri AS, et al. Carbapenem-Resistant Klebsiella pneumoniae: Diversity, Virulence, and Antimicrobial Resistance. Infect Drug Resist 2022;15:6177-87.
https://doi.org/10.2147/IDR.S387742 [DOI:10.2147/idr.s387742] [PMID] []
10. Russo TA, Marr CM. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae. Clin Microbiol Rev 2019;32(3).
https://doi.org/10.1128/CMR.00001-19 [DOI:10.1128/cmr.00001-19] [PMID] []
11. Choby JE, Howard-Anderson J, Weiss DS. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae - clinical and molecular perspectives. J Intern Med 2020;287(3):283-300. [DOI:10.1111/joim.13007] [PMID] []
12. Yu F, Lv J, Niu S, Du H, Tang YW, Pitout JDD, et al. Multiplex PCR Analysis for Rapid Detection of Klebsiella pneumoniae Carbapenem-Resistant (Sequence Type 258 [ST258] and ST11) and Hypervirulent (ST23, ST65, ST86, and ST375) Strains. J Clin Microbiol 2018;56(9).
https://doi.org/10.1128/JCM.00731-18 [DOI:10.1128/jcm.00731-18] [PMID] []
13. Chang CY, Ong ELC. Positive string test in hypervirulent Klebsiella pneumoniae liver abscess. Oxf Med Case Reports 2022;2022(4):omac035. [DOI:10.1093/omcr/omac035] [PMID] []
14. Wayne PA. Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing. Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI) 2022;32th Informational Supplement. (M100-S28). [URL]
15. Nobari S, Shahcheraghi F, Rahmati Ghezelgeh F, Valizadeh B. Molecular characterization of carbapenem-resistant strains of Klebsiella pneumoniae isolated from Iranian patients: first identification of blaKPC gene in Iran. Microb Drug Resist 2014;20(4):285-93. [DOI:10.1089/mdr.2013.0074] [PMID]
16. Nordmann P, Poirel L, Carrër A, Toleman MA, Walsh TR. How to detect NDM-1 producers. J Clin Microbiol 2011;49(2):718-21.
https://doi.org/10.1128/JCM.01773-10 [DOI:10.1128/jcm.01773-10] [PMID] []
17. Marr CM, Russo TA. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae: a new public health threat. Expert Rev Anti Infect Ther 2019;17(2):71-3. [DOI:10.1080/14787210.2019.1555470] [PMID] []
18. Rastegar S, Moradi M, Kalantar-Neyestanaki D, Ali Golabi D, Hosseini-Nave H. Virulence Factors, Capsular Serotypes and Antimicrobial Resistance of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae and Classical Klebsiella pneumoniae in Southeast Iran. Infect Chemother 2019. [DOI:10.3947/ic.2019.0027] [PMID]
19. Shoja S, Ansari M, Bengar S, Rafiei A, Shamseddin J, Alizade H. Bacteriological characteristics of hypervirulent Klebsiella pneumoniae rmpA gene (hvKp-rmpA)-harboring strains in the south of Iran. Iran J Microbiol 2022;14(4):475-83. [DOI:10.18502/ijm.v14i4.10233] [PMID] []
20. Mohammad Ali Tabrizi A, Badmasti F, Shahcheraghi F, Azizi O. Outbreak of hypervirulent Klebsiella pneumoniae harbouring bla(VIM-2) among mechanically-ventilated drug-poisoning patients with high mortality rate in Iran. J Glob Antimicrob Resist 2018;15:93-8. [DOI:10.1016/j.jgar.2018.06.020] [PMID]
21. Taraghian A, Nasr Esfahani B, Moghim S, Fazeli H. Characterization of Hypervirulent Extended-Spectrum β-Lactamase-Producing Klebsiella pneumoniae Among Urinary Tract Infections: The First Report from Iran. Infect Drug Resist 2020;13:3103-11.
https://doi.org/10.2147/IDR.S264440 [DOI:10.2147/idr.s264440] [PMID] []
22. Sanikhani R, Moeinirad M, Solgi H, Hadadi A, Shahcheraghi F, Badmasti F. The face of hypervirulent Klebsiella pneumoniae isolated from clinical samples of two Iranian teaching hospitals. Ann Clin Microbiol Antimicrob 2021;20(1):58. [DOI:10.1186/s12941-021-00467-2] [PMID] []
23. Sanikhani R, Moeinirad M, Shahcheraghi F, Lari A, Fereshteh S, Sepehr A, et al. Molecular epidemiology of hypervirulent Klebsiella pneumoniae: a systematic review and meta-analysis. Iran J Microbiol 2021;13(3):257-65. [DOI:10.18502/ijm.v13i3.6384] [PMID] []
24. Rafat C, Messika J, Barnaud G, Dufour N, Magdoud F, Billard-Pomarès T, et al. Hypervirulent Klebsiella pneumoniae, a 5-year study in a French ICU. J Med Microbiol 2018;67(8):1083-9. [DOI:10.1099/jmm.0.000788] [PMID]
25. Zhang Y, Ma Y, Ye L, Luo Y, Yang J. Prevalence and Antimicrobial Susceptibility of Hypervirulent Klebsiella pneumoniae isolates in China. Clin Infect Dis 2014;58(10):1493-4. [DOI:10.1093/cid/ciu110] [PMID]
26. Jian-Li W, Yuan-Yuan S, Shou-Yu G, Fei-Fei D, Jia-Yu Y, Xue-Hua W, et al. Serotype and virulence genes of Klebsiella pneumoniae isolated from mink and its pathogenesis in mice and mink. Sci Rep 2017;7(1):17291. [DOI:10.1038/s41598-017-17681-8] [PMID] []
27. Zhao J, Liu C, Liu Y, Zhang Y, Xiong Z, Fan Y, et al. Genomic characteristics of clinically important ST11 Klebsiella pneumoniae strains worldwide. J Glob Antimicrob Resist 2020;22:519-26. [DOI:10.1016/j.jgar.2020.03.023] [PMID]
28. Farhadi M, Ahanjan M, Goli HR, Haghshenas MR, Gholami M. High frequency of multidrug-resistant (MDR) Klebsiella pneumoniae harboring several β-lactamase and integron genes collected from several hospitals in the north of Iran. Ann Clin Microbiol Antimicrob 2021;20(1):70. [DOI:10.1186/s12941-021-00476-1] [PMID] []
29. Turner KM, Hanage WP, Fraser C, Connor TR, Spratt BG. Assessing the reliability of eBURST using simulated populations with known ancestry. BMC Microbiol 2007;7:30. [DOI:10.1186/1471-2180-7-30] [PMID] []
30. Sohrabi M, Alizade Naini M, Rasekhi A, Oloomi M, Moradhaseli F, Ayoub A, et al. Emergence of K1 ST23 and K2 ST65 hypervirulent klebsiella pneumoniae as true pathogens with specific virulence genes in cryptogenic pyogenic liver abscesses Shiraz Iran. Front Cell Infect Microbiol 2022;12:964290. [DOI:10.3389/fcimb.2022.964290] [PMID] []
31. Roulston KJ, Bharucha T, Turton JF, Hopkins KL, Mack DJF. A case of NDM-carbapenemase-producing hypervirulent Klebsiella pneumoniae sequence type 23 from the UK. JMM Case Rep 2018;5(9):e005130. [DOI:10.1099/jmmcr.0.005130] [PMID] []
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
