دوره 34، شماره 1 - ( 1-1402 )
جلد 34 شماره 1 صفحات 57-46 |
برگشت به فهرست نسخه ها
Download citation:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
BibTeX | RIS | EndNote | Medlars | ProCite | Reference Manager | RefWorks
Send citation to:
Shokrzadeh M, Bravaye M, Mortazavi P, Motafeghi F. EVALUATION OF THE PROTECTIVE ROLE OF HYDROALCOHOLIC EXTRACT OF GINGER AND N-ACETYLCYSTEINE ON GENETIC DISORDER CAUSED BY SODIUM AZIDE ON HUMAN BLOOD LYMPHOCYTES BY MICRONUCLEUS METHOD. Studies in Medical Sciences 2023; 34 (1) :46-57
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5980-fa.html
URL: http://umj.umsu.ac.ir/article-1-5980-fa.html
شکرزاده محمد، براویه میلاد، مرتضوی پرهام، متفقی فرزانه السادات. ارزیابی نقش محافظتی عصاره هیدروالکلی زنجبیل و ان استیل سیستئین بر اختلال ژنتیکی سلول‌های مغز استخوان در مواجهه با سدیم آزید به روش میکرونوکلئوس. مجله مطالعات علوم پزشکی. 1402; 34 (1) :46-57
پژوهشگر فوق دکتری، مرکز تحقیقات غدد تولید مثل، پژوهشکده علوم غدد و متابولیسم، دانشگاه علوم پزشکی شهید بهشتی، تهران، ایران. دکترای سم شناسی، گروه فارماکولوژی و سم شناسی، دانشکده داروسازی، دانشگاه علوم پزشکی مازندران، ساری، ایران (نویسنده مسئول) ، farzaneh.motafeghi@gmail.com
چکیده: (2101 مشاهده)
پیش زمینه و هدف: هدف از این مطالعه بررسی اثرات محافظتی عصاره زنجبیل و ان استیل سیستئین بر سمیت ژنتیکی ناشی از سدیم آزید در لنفوسیت های خون محیطی بود. سدیم آزید به عنوان یک جهش‌زای ژنتیکی قوی در موجودات مختلف از جمله باکتری‌ها، گیاهان و حیوانات شناخته می‌شود و یک عامل ژنوتوکسیک در نظر گرفته می‌شود که به طور گسترده بر بسیاری از ارگانیسم‌ها تأثیر می‌گذارد.
مواد و روش کار: در این مطالعه تجربی، عصاره هیدروالکلی زنجبیل (0.1، 0.5 و 1 میکرومولار) و استیل سیستئین (50، 100 و 500 میکرومولار) از نظر اثرات محافظتی بر روی سمیت ژنتیکی ناشی از سدیم آزید در لنفوسیت‌ها مورد آزمایش قرار گرفتند. برای آنالیز نمونه خون انسان از روش میکرونوکلئوس استفاده شد. داده‌های جمع‌آوری‌شده از آزمایش با استفاده از نرم‌افزار آماری Graph Pad Prism v8 مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت و P<0.05 به عنوان سطح معنی‌داری در نظر گرفته شد.
یافته ها: نتایج نشان داد که سدیم آزید باعث ایجاد سمیت ژنتیکی در لنفوسیت‌های خون انسان می‌شود و باعث تشکیل ریزهسته‌ها می‌شود. تیمار لنفوسیت ها با غلظت های مختلف استیل سیستئین و زنجبیل باعث کاهش تولید میکرونوکلئوس ها به صورت وابسته به دوز شد که منجر به کاهش سمیت ژنتیکی شد (p<0.05)
بحث و نتیجه گیری: این مطالعه نتیجه گرفت که ان استیل سیستئین، در غلظت های 100 و 500 میکرومولار، و زنجبیل، در تمام دوزها، منجر به کاهش وابسته به دوز در سمیت ژنی شد. این نشان می دهد که N-استیل سیستئین و ترکیبات موجود در عصاره زنجبیل دارای قدرت آنتی اکسیدانی بالایی هستند و آنها را قادر می سازد تا سمیت ژنتیکی ناشی از سدیم آزید را کاهش دهند.
مواد و روش کار: در این مطالعه تجربی، عصاره هیدروالکلی زنجبیل (0.1، 0.5 و 1 میکرومولار) و استیل سیستئین (50، 100 و 500 میکرومولار) از نظر اثرات محافظتی بر روی سمیت ژنتیکی ناشی از سدیم آزید در لنفوسیت‌ها مورد آزمایش قرار گرفتند. برای آنالیز نمونه خون انسان از روش میکرونوکلئوس استفاده شد. داده‌های جمع‌آوری‌شده از آزمایش با استفاده از نرم‌افزار آماری Graph Pad Prism v8 مورد تجزیه و تحلیل قرار گرفت و P<0.05 به عنوان سطح معنی‌داری در نظر گرفته شد.
یافته ها: نتایج نشان داد که سدیم آزید باعث ایجاد سمیت ژنتیکی در لنفوسیت‌های خون انسان می‌شود و باعث تشکیل ریزهسته‌ها می‌شود. تیمار لنفوسیت ها با غلظت های مختلف استیل سیستئین و زنجبیل باعث کاهش تولید میکرونوکلئوس ها به صورت وابسته به دوز شد که منجر به کاهش سمیت ژنتیکی شد (p<0.05)
بحث و نتیجه گیری: این مطالعه نتیجه گرفت که ان استیل سیستئین، در غلظت های 100 و 500 میکرومولار، و زنجبیل، در تمام دوزها، منجر به کاهش وابسته به دوز در سمیت ژنی شد. این نشان می دهد که N-استیل سیستئین و ترکیبات موجود در عصاره زنجبیل دارای قدرت آنتی اکسیدانی بالایی هستند و آنها را قادر می سازد تا سمیت ژنتیکی ناشی از سدیم آزید را کاهش دهند.
نوع مطالعه: پژوهشي(توصیفی- تحلیلی) |
موضوع مقاله:
مسمومیت
فهرست منابع
1. Neeley WL, Essigmann JM. Mechanisms of formation, genotoxicity, and mutation of guanine oxidation products. Chem Res Toxicol 2006;19(4):491-505. [DOI:10.1021/tx0600043] [PMID]
2. Domchek SM, Friebel TM, Singer CF, Evans DG, Lynch HT, Isaacs C, et al. Association of risk-reducing surgery in BRCA1 or BRCA2 mutation carriers with cancer risk and mortality. Jama 2010;304(9):967-75. [DOI:10.1001/jama.2010.1237] [PMID] [PMCID]
3. Rodriguez-Mari A, Canestro C, BreMiller RA, Nguyen-Johnson A, Asakawa K, Kawakami K, et al. Sex reversal in zebrafish fancl mutants is caused by Tp53-mediated germ cell apoptosis. PLoS Genetics 2010;6(7):e1001034. [DOI:10.1371/journal.pgen.1001034] [PMID] [PMCID]
4. Fass L. Imaging and cancer: a review. Mol Oncol 2008;2(2):115-52. [DOI:10.1016/j.molonc.2008.04.001] [PMID] [PMCID]
5. Jost M, Szurman-Zubrzycka M, Gajek K, Szarejko I, Stein N. TILLING in barley. Methods Mol Biol 2019;1900:73-94. [DOI:10.1007/978-1-4939-8944-7_6] [PMID]
6. Ragavan ML, Das N. In vitro studies on therapeutic potential of probiotic yeasts isolated from various sources. Curr Microbiol 2020;77:2821-30. [DOI:10.1007/s00284-020-02100-5] [PMID]
7. Turhan K, Ozturkcan SA, Turgut Z, Karadayi M, Gulluce M. Protective properties of five newly synthesized cyclic compounds against sodium azide and N-methyl-N′-nitro-N-nitrosoguanidine genotoxicity. Toxicol Ind Health 2012;28(7):605-13. [DOI:10.1177/0748233711416954] [PMID]
8. Mao Q-Q, Xu X-Y, Cao S-Y, Gan R-Y, Corke H, Beta T, et al. Bioactive compounds and bioactivities of ginger (Zingiber officinale Roscoe). Foods 2019;8(6):185. [DOI:10.3390/foods8060185] [PMID] [PMCID]
9. Motafeghi F, Mortazavi P, Salman Mahiny AH, Abtahi MM, Shokrzadeh M. The role of ginger's extract and N-acetylcysteine against docetaxel-induced oxidative stress and genetic disorder. Drug Chem Toxicol 2022:1-8. [DOI:10.1080/01480545.2022.2075377] [PMID]
10. Grzanna R, Lindmark L, Frondoza CG. Ginger-an herbal medicinal product with broad anti-inflammatory actions. J Med Food 2005;8(2):125-32. [DOI:10.1089/jmf.2005.8.125] [PMID]
11. LeDuc CA, Skowronski AA, Rosenbaum M. The Role of Leptin in the Development of Energy Homeostatic Systems and the Maintenance of Body Weight. Front Physiol 2021;12:789519. [DOI:10.3389/fphys.2021.789519] [PMID] [PMCID]
12. Stoilova I, Krastanov A, Stoyanova A, Denev P, Gargova S. Antioxidant activity of a ginger extract (Zingiber officinale). Food Chem 2007;102(3):764-70. [DOI:10.1016/j.foodchem.2006.06.023]
13. Masuda Y, Kikuzaki H, Hisamoto M, Nakatani N. Antioxidant properties of gingerol related compounds from ginger. Biofactors 2004;21(1‐4):293-6. [DOI:10.1002/biof.552210157] [PMID]
14. Izadi F, Jafari M, Bahdoran H, Asgari A, Divsalar A, Salehi M. The role of N-acetyl cysteine on reduction of diazinon-induced oxidative stress in rat liver and kidney. J Rafsanjan Univ Med Sci 2014;12(11):895-906. [Google Scholar]
15. Šalamon Š, Kramar B, Marolt TP, Poljšak B, Milisav I. Medical and dietary uses of N-acetylcysteine. Antioxidants 2019;8(5):111. [DOI:10.3390/antiox8050111] [PMID] [PMCID]
16. Hosseinalipour E, Zirak Javanmard M, Karimipour M. Protective effects of N-acetylcysteine on liver tissue in rats treated with cyclophosphamide. J Urmia Univ Med Sci 2017;28(7):498-506. [PMID]
17. Siswanto S, Arozal W, Juniantito V, Grace A, Agustini FD. The effect of mangiferin against brain damage caused by oxidative stress and inflammation induced by doxorubicin. HAYATI J Biosci 2016;23(2):51-5. [DOI:10.1016/j.hjb.2016.02.001]
18. Mokhtari V, Afsharian P, Shahhoseini M, Kalantar SM, Moini A. A review on various uses of N-acetyl cysteine. Yakhteh 2017;19(1):11. [Google Scholar]
19. Al-Kamel A, Al-Hajj WA, Halboub E, Abdulrab S, Al-Tahami K, Al-Hebshi NN. N-acetyl cysteine versus chlorhexidine mouthwashes in prevention and treatment of experimental gingivitis: a randomized, triple-blind, placebo-controlled clinical trial. Clin Oral Invest 2019;23:3833-42. [DOI:10.1007/s00784-019-02813-3] [PMID]
20. Shokrzadeh M, Motafeghi F, Shokrzadeh S, Pourasadollah S. Evaluation of the role of hydroalcoholic extract of ginger (zingiber officinale l.) and vitamin c on cell viability of normal gingival and skin cells in the presence of drabkin's solution. Stud Med Sci 2022;33(3):220-33. [DOI:10.52547/umj.33.3.220]
21. Motafeghi F, Habibi E, Firozjaei M, Eghbali M, Mortazavi P, Salmanmahiny A, et al. The Cytotoxic Effect of the Tarragon (Artemisia dracunculus L.) Hydroalcoholic Extract on the HT-29, MKN45, and MCF-7 Cell Lines. Pharm Biomed Res 2023;9(1):27-36. [DOI:10.32598/PBR.9.1.1025.2]
22. Shokrzadeh M, Mortazavi P, Karimi E, NasirOghli B, Shokrzadeh S, Motafeghi F. Evaluation of the role of vitamin C and melatonin on the genetic disorder of human blood lymphocytes in the presence of vincristine and permethrin. Tabari Biomed Stud Res J 2021;3(3):21-30. [DOI:10.18502/tbsrj.v3i3.6986]
23. Motafeghi F, Mortazavi P, Ghassemi-Barghi N, Zahedi M, Shokrzadeh M. Dexamethasone as an anti-cancer or hepatotoxic. Toxicol Mech Methods 2023;33(2):161-71. [DOI:10.1080/15376516.2022.2105183] [PMID]
24. Chumjai N, Vangnai AS. A colorimetric-based bioreporter for rapid genotoxicity monitoring using Escherichia coli. Sci Asia 2020;46(344):10.2306. [DOI:10.2306/scienceasia1513-1874.2020.039]
25. Tammasakchai A, Peungvicha P, Temsiririrkkul R, Siripong P, Puchadapirom P. Non-mutagenic and genotoxic effects of water extract of Piper sarmentosum using Ames and micronucleus assay. Songklanakarin J Sci Tech 2021;43(1). [Google Scholar]
26. Shokrzadeh M, Rahmati Kukandeh M, Kargar Darabi N, Modanloo M, Fallah M, Mohammadpour A. Cellular effects of naringin in prevention of genotoxicity caused by mifepristone on human blood lymphocytes. J Mazandaran Univ Med Sci 2018;28(161):115-20. [Google Scholar]
27. De Flora S, Izzotti A, Albini A, D'Agostini F, Bagnasco M, Balansky R. Antigenotoxic and cancer preventive mechanisms of N-acetyl-L-cysteine. Cancer Chemoprevention 2004:37-67. [DOI:10.1007/978-1-59259-767-3_3]
28. De Flora S, Izzotti A, D'Agostini F, Balansky RM. Mechanisms of N-acetylcysteine in the prevention of DNA damage and cancer, with special reference to smoking-related end-points. Carcinogenesis 2001;22(7):999-1013. [DOI:10.1093/carcin/22.7.999] [PMID]
29. Poprac P, Jomova K, Simunkova M, Kollar V, Rhodes CJ, Valko M. Targeting free radicals in oxidative stress-related human diseases. Trends Pharmacol Sci 2017;38(7):592-607. [DOI:10.1016/j.tips.2017.04.005] [PMID]
30. Aoki S, Morita M, Hirao T, Yamaguchi M, Shiratori R, Kikuya M, et al. Shift in energy metabolism caused by glucocorticoids enhances the effect of cytotoxic anti-cancer drugs against acute lymphoblastic leukemia cells. Oncotarget 2017;8(55):94271. [DOI:10.18632/oncotarget.21689] [PMID] [PMCID]
31. Schadich E, Hlaváč J, Volná T, Varanasi L, Hajdúch M, Džubák P. Effects of ginger phenylpropanoids and quercetin on Nrf2-ARE pathway in human BJ fibroblasts and HaCaT keratinocytes. BioMed Res Int 2016;2016. [DOI:10.1155/2016/2173275] [PMID] [PMCID]
32. Li Y, Hong Y, Han Y, Wang Y, Xia L. Chemical characterization and antioxidant activities comparison in fresh, dried, stir-frying and carbonized ginger. J Chromatography B 2016;1011:223-32. [DOI:10.1016/j.jchromb.2016.01.009] [PMID]
33. Romero A, Forero M, Sequeda-Castañeda LG, Grismaldo A, Iglesias J, Celis-Zambrano CA, et al. Effect of ginger extract on membrane potential changes and AKT activation on a peroxide-induced oxidative stress cell model. J King Saud Univ Sci 2018;30(2):263-9. [DOI:10.1016/j.jksus.2017.09.015]
34. Chen H, Fu J, Chen H, Hu Y, Soroka DN, Prigge JR, et al. Ginger compound [6]-shogaol and its cysteine-conjugated metabolite (M2) activate Nrf2 in colon epithelial cells in vitro and in vivo. Chem Res Toxicol 2014;27(9):1575-85. [DOI:10.1021/tx500211x] [PMID] [PMCID]
35. Saiah W, Halzoune H, Djaziri R, Tabani K, Koceir EA, Omari N. Antioxidant and gastroprotective actions of butanol fraction of Zingiber officinale against diclofenac sodium‐induced gastric damage in rats. J Food Biochem 2018;42(1):e12456. [DOI:10.1111/jfbc.12456]
36. Abolaji AO, Ojo M, Afolabi TT, Arowoogun MD, Nwawolor D, Farombi EO. Protective properties of 6-gingerol-rich fraction from Zingiber officinale (Ginger) on chlorpyrifos-induced oxidative damage and inflammation in the brain, ovary and uterus of rats. Chem Biol Interact 2017;270:15-23. [DOI:10.1016/j.cbi.2017.03.017] [PMID]
37. Mohammadi F, Nikzad H, Taghizadeh M, Taherian A, Azami‐Tameh A, Hosseini S, et al. Protective effect of Zingiber officinale extract on rat testis after cyclophosphamide treatment. Andrologia 2014;46(6):680-6. [DOI:10.1111/and.12135] [PMID]
38. López-Romero D, Izquierdo-Vega JA, Morales-González JA, Madrigal-Bujaidar E, Chamorro-Cevallos G, Sánchez-Gutiérrez M, et al. Evidence of some natural products with antigenotoxic effects. Part 2: plants, vegetables, and natural resin. Nutrients 2018;10(12):1954. [DOI:10.3390/nu10121954] [PMID] [PMCID]
39. El Nabi S, El-Garawani IM, Salman AM, Ouda RI. the possible antigenotoxic potential of ginger oil on etoposide-treated Albino rats. Saudi J Med Pharm Sci 2017;3:693. [Google Scholar]
40. Kikuzaki H, Nakatani N. Antioxidant effects of some ginger constituents. J Food Sci 1993;58(6):1407-10. [DOI:10.1111/j.1365-2621.1993.tb06194.x]
41. Ghasemzadeh A, Jaafar HZ, Rahmat A. Antioxidant activities, total phenolics and flavonoids content in two varieties of Malaysia young ginger (Zingiber officinale Roscoe). Molecules 2010;15(6):4324-33. [DOI:10.3390/molecules15064324] [PMID] [PMCID]
42. Jitoe A, Masuda T, Tengah I, Suprapta DN, Gara I, Nakatani N. Antioxidant activity of tropical ginger extracts and analysis of the contained curcuminoids. J Agri Food Chem 1992;40(8):1337-40. [DOI:10.1021/jf00020a008]
43. Chan EWC, Lim YY, Wong L, Lianto FS, Wong S, Lim K, et al. Antioxidant and tyrosinase inhibition properties of leaves and rhizomes of ginger species. Food Chem 2008;109(3):477-83. [DOI:10.1016/j.foodchem.2008.02.016]
44. van Zandwijk N. N‐acetylcysteine (NAC) and glutathione (GSH): antioxidant and chemopreventive properties, with special reference to lung cancer. J Cell Biochem 1995;59(S22):24-32. [DOI:10.1002/jcb.240590805] [PMID]
45. Sadowska A, Manuel-Y-Keenoy B, De Backer W. Antioxidant and anti-inflammatory efficacy of NAC in the treatment of COPD: discordant in vitro and in vivo dose-effects: a review. Pulm Pharmacol Ther 2007;20(1):9-22. [DOI:10.1016/j.pupt.2005.12.007] [PMID]
46. Ates B, Abraham L, Ercal N. Antioxidant and free radical scavenging properties of N-acetylcysteine amide (NACA) and comparison with N-acetylcysteine (NAC). Free Radic Res 2008;42(4):372-7. [DOI:10.1080/10715760801998638] [PMID]
47. Liu J, Liu M, Ye X, Liu K, Huang J, Wang L, et al. Delay in oocyte aging in mice by the antioxidant N-acetyl-L-cysteine (NAC). Hum Reprod 2012;27(5):1411-20. [DOI:10.1093/humrep/des019] [PMID]
48. Dodd S, Dean O, Copolov DL, Malhi GS, Berk M. N-acetylcysteine for antioxidant therapy: pharmacology and clinical utility. Expert Opin Biol Ther 2008;8(12):1955-62. [DOI:10.1517/14728220802517901] [PMID]
49. Aruoma OI, Halliwell B, Hoey BM, Butler J. The antioxidant action of N-acetylcysteine: its reaction with hydrogen peroxide, hydroxyl radical, superoxide, and hypochlorous acid. Free Radic Biol Med 1989;6(6):593-7. [DOI:10.1016/0891-5849(89)90066-X] [PMID]
ارسال پیام به نویسنده مسئول
| بازنشر اطلاعات | |
 |
این مقاله تحت شرایط Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License قابل بازنشر است. |
